lip2000脂質體2000是zui為人熟知的轉染產品之一。已知可為517種細胞，提供高轉染效率(表達轉基因細胞的百分數)和活性(細胞抽提物中轉入基因的酶產物活性)。

　　特點 兩個關鍵性特點使得Lipofectamine 2000試劑的轉染步驟快速簡便：

　　(1)DNA-陽離子脂質體試劑的復合體可以直接加入到細胞培養基中，有血清也不怕

　　(2)轉染后不需要除去Lipofectamine 2000試劑，無需換培養基

　　操作流程 事實上Lipofectamine系列產品操作流程都是又快又簡單：稀釋DNA以及Lipofectamine 2000，混合2種稀釋液保溫20分鐘，加入培養細胞中孵育24-96小時檢測結果。下面是Invitrogen提供的詳細流程和注意事項。

　　轉染前一天，胰酶消化細胞并計數，細胞鋪板，lip2000脂質體2000使其在轉染日密度為90%。細胞鋪板在0.5ml含血清，不含抗生素的正常生長的培養基中。

　　對于每孔細胞，使用50μl無血清培養基(如OPTI-MEMⅠ培養基)稀釋0.8μg-1.0μg DNA。

　　對于每孔細胞，使用50μl OPTI-MEMⅠ培養基稀釋1μl-3μl LIPOFECTAMINE 2000試劑。Lipofectamine 2000稀釋后保溫5分鐘(在30分鐘內同稀釋的DNA混合。保溫時間過長會降低活性。) 注意：即使Lipofectamine 2000使用OPTI-MEMⅠ稀釋，細胞也可以使用D-MEM培養。如果D-MEM做為Lipofectamine 2000的稀釋液，必須在5分鐘內同稀釋的DNA混合。

　　混合稀釋的DNA(第2步)和稀釋的lip2000脂質體2000(第3步)。在室溫保溫20分鐘。

　　注意：溶液可能會混濁，但不會影響轉染。復合物可以在室溫保持6小時穩定。

　　直接將復合物加入到每孔中，搖動培養板，輕輕混勻。

　　注意：如果在無血清條件下轉染，使用含血清的正常生長培養基進行細胞鋪板。在加入復合物前移去生長培養基，替換為0.5ml無血清培養基。

　　在37℃，5%的CO2中保溫24-48小時，無須去掉復合物或更換培養基或者在4-5小時后更換生長培養基也不會降低轉染活性。

　　在細胞中加入復合物24-72小時后，分析細胞抽提物或進行原位細胞染色，檢測報告基因活性。這依賴于細胞類型和啟動子活性。對穩定表達，在開始轉染一天后將細胞傳代至新鮮培養基中，兩天后加入篩選抗生素。進行穩定表達需要數天或數周。

　　對于96孔板培養，不再需要提前一天進行細胞鋪板，而可以直接在平板中制備復合物，然后將細胞懸浮液加入到復合物就可以了，這樣進一步減少了轉染時間。這種改進步驟已經過293-H，293-F，COS-7L和CHO細胞的試驗，同傳統方法相比活性稍低?？旖莸牟襟E和蛋白表達細胞系的轉染使得lip2000脂質體2000非常適用于96孔板的高通量轉染，比如cDNA文庫的篩選和蛋白瞬時表達。

　　適用細胞株范圍 不同的轉染試劑所適用的細胞株范圍各不相同。一個實驗室常常會用到不止一種細胞株，甚至是比較特殊的細胞株。一個轉染試劑所適用的細胞株越多，當然越受用戶的歡迎。根據Invotrogen的資料，Lipofectamine 2000已經證實可用于高達517種細胞株，覆蓋了相當廣的范圍。

　　適用的核酸類型和DNA大小 有的轉染試劑是為siRNA轉染而設計的，有的則是為DNA轉染設計。Lipofectamine 2000可以適用于包括DNA，siRNA, dsRNA, 熒光標記的Oligo, RNA等在內的核酸轉染，這使得Lipofectamine 2000適用范圍非常廣泛，無論是基因表達分析的DNA轉染，或者是RNAi，lip2000脂質體2000都能勝任，這樣你就不需要為不同目的購買不同試劑了。值得注意的是，zui常用的DNA轉染中有一個DNA大小的問題，太大的質粒不那么好轉。我們暫時還沒有找到Lipofectamine 2000相應的資料。

　　注意事項 Lipofectamine 2000要求細胞鋪板密度較高，以90%-95%為佳，這有助于減少陽離子脂質體細胞毒性造成的影響。Lipofectamine 2000可用于有血清培養基的轉染，并且轉染前后不需要換培養基，使得操作方便了許多，但是要注意制備轉染復合物時要求用無血清培養基稀釋DNA和轉染試劑，因為血清會影響復合物的形成。復合物形成后是可以加入血清。這里要特別注意檢測所用的無血清培養基是否能和Lipofectamine 2000匹配，比如已知CD293, SFM II, VP-SFM就不行。此外還應該留意，如果你研究的基因要求比較長的表達時間，比如細胞周期相關基因，或者時細胞表面蛋白，選擇細胞鋪板密較低的轉染試劑，不適合用lip2000脂質體2000。

　　對于大多數陽離子脂質體試劑，應優化DNA濃度和陽離子脂質體試劑量以得到zui大的轉染效率。DNA和轉染試劑的比例，通常推薦是1:2或者1:3，優化可以從0.5-5之間慢慢試。使用小劑量確定的優化條件可以用于進行大劑量的轉染，只要根據培養板表面比例線性增加鋪板細胞的數目、陽離子脂質體試劑和DNA量就可以了。

　　還有轉染的時候培養基中不能添加抗生素?？股?，比如青霉素和鏈霉素，一般對于真核細胞無毒，但陽離子脂質體試劑增加了細胞的通透性，使抗生素可以進入細胞。這降低了細胞的活性，導致轉染效率低。所以，在轉染培養基中不能使用抗生素，甚至在準備轉染前進行細胞鋪板時也要避免使用抗生素。這樣，在轉染前就不必潤洗細胞。對于穩定轉染，不要在選擇性培養基中使用青霉素和鏈霉素，因為這些抗生素是GENETICIN選擇性抗生素的競爭性抑制劑。另外，lip2000脂質體2000為了保證無血清培養基中細胞的健康生長，使用比含血清培養基更少的抗生素量。